Техника безопасности при работе в микробиологической лаборатории

Главная / Охрана труда / Техника безопасности при работе в микробиологической лаборатории

Назначение

Лаборатории микробиологии проводят исследования в области бактериологии, вирусологии и иммунологии в зависимости от профиля. Лаборатория должна быть оснащена соответствующим оборудованием и оборудованием в соответствии со своим назначением.

Лаборатория должна располагаться в отдельном здании или изолированной его части с водоснабжением, канализацией, отоплением и горячим водоснабжением и отдельным входом.

Для лаборатории общей микробиологии необходимы следующие помещения:

Лаборатория
Автоклав
Приготовление на среднем огне
С бактериологическим боксом
Моечная станция
Виварий
Подсобное помещение (душ, кладовая, гардероб, туалет)
Регистрация.

Правила работы и поведения в бактериологической лаборатории общего назначения

Вы не сможете войти в помещение лаборатории, если на вас нет специальной одежды, такой как халат, головной убор и сменная обувь.
Есть, пить и хранить продукты питания на территории запрещено курение.
Лабораторные характеристики недоступны. Что надеть вне лаборатории.
После окончания работы загрязненные материалы следует выбросить, а инструменты и поверхности рабочего стола продезинфицировать.
Всегда мойте руки после работы с культурами или животными и перед выходом из лаборатории.
Штаммы микробов и инфекционные материалы необходимо хранить плотно закрытыми в сейфе или холодильнике.
При повреждении емкостей, содержащих инфекционный материал, или при случайном проливании инфекционного материала предметы, одежду, столы и помещения следует дезинфицировать.
Персонал лаборатории обязан быть вакцинирован против инфекционных болезней, с возбудителями которых возможно обращение в лаборатории.
В лаборатории должны иметься инструкции по технике безопасности, которые должен знать и строго соблюдать персонал. О любых чрезвычайных ситуациях, представляющих угрозу биологической безопасности, необходимо немедленно уведомлять руководство лаборатории и принимать все меры по предотвращению их последствий.
Каждая бактериальная лаборатория должна иметь лицензию на работу с возбудителями.

Для работы в лаборатории необходимо носить халат, чтобы защитить одежду и кожу от контакта с реагентами, коррозии и загрязнения микроорганизмами.
Каждый должен работать на закрепленном за ним рабочем месте.

Перемещение в другие места без разрешения инструктора не допускается. Рабочее место должно содержаться в чистоте и не загромождено посудой и другими предметами.
Студентам запрещается работать в лаборатории в неустановленное время без присутствия преподавателя или научного сотрудника или без разрешения преподавателя.

Вы можете начать только после получения инструкций по технике безопасности и разрешения учителя перед выполнением каждого экспериментального задания.
Приступая к работе, вам необходимо:

Понимать методы работы и правила безопасного выполнения.
Убедитесь, что собранный материал соответствует материалам, указанным в рабочем порядке.

При проведении экспериментов используйте только чистую и сухую лабораторную посуду. Для измерения

Для каждого реагента требуется мерный контейнер (пипетка, бюретка, стакан, градуированный цилиндр или мерный стакан). Во избежание порчи реагентов не переливайте излишки реагента из пробирки обратно в контейнер.

Опыты необходимо проводить в строгом соответствии с описанием методических указаний, особенно порядка добавления реагентов.

Если в ходе эксперимента требуется нагрев реакционной смеси, необходимо следовать приведенным методическим указаниям для таких способов нагрева, как водяная баня, электроплита или газовая горелка. Нагревание легколетучих легковоспламеняющихся материалов на открытом воздухе опасно огонь.

В лабораториях по диагностике инфекционных болезней

Лабораторная работа по диагностике инфекционных заболеваний сопряжена с риском заражения персонала и микробного заражения окружающей среды патогенными биологическими агентами (ПБА).

В состав ПБА входят различные группы микроорганизмов, такие как бактерии, вирусы, микроскопические грибы и гельминты, а также любые материалы, в которых они могут присутствовать. В Российской Федерации принята классификация ПБА на четыре группы по степени опасности для человека:

I группа – возбудители особо опасных инфекционных болезней (возбудители зоонозной чумы);
II группа - возбудители высококонтагиозных (инфекционных) инфекций человека (бактерии - сибирская язва, бруцеллез, туляремия, риноденит, холера, возбудители некоторых риккетсиозов, хламидии, микроскопические грибы - возбудители бластомикоза, гистоплазмоза, кокцидиоидомикоза);
III группа - возбудители инфекционных заболеваний, выделенные в самостоятельные нозологические единицы (бактерии - кампилобактериоз, ботулизм, столбняк, лептоспироз, листериоз, туберкулез, проказа, рожа, нокардиоз, пастереллез, сальмонеллез, риккетсиоз и микроскопические грибковые возбудители хламидиоза, аспергиллеза, кандидоза, криптококкоза);
Группа IV — большая группа условно-патогенных микроорганизмов, обитающих в макромикроорганизмах и способных вызывать разнообразные патологии при снижении общей резистентности.

Требования к помещениям

По указанным выше причинам микробиологические лаборатории, работающие с биологически активными биологическими агентами, располагаются в зданиях или помещениях с отдельными входами.

Помещения лаборатории разделены на «грязную» и «чистую» зоны, причем в первой зоне возбудители используются, а во второй нет. Между «чистой» и «грязной» зонами находится санпропускник.

В «чистую зону» входят:

Гардероб;
туалет;
Подсобное помещение;
прачечная;
Подготовка;
помещения для приготовления, обращения и хранения питательных сред и диагностических биопрепаратов в холодильных камерах;
Комната директора лаборатории.

К «грязным» зонам относятся:

средства приема и учета материалов, полученных для исследования;
кабинеты бактериологических, серологических и гельминтологических исследований;
Комната термостата;
Автоклав.

Все окна и двери во всех комнатах должны быть плотно закрыты. Приточные и вытяжные отверстия в «грязной» зоне оснащены фильтрами для тщательной очистки вытяжного воздуха.

Рабочие помещения, работающие с живыми патогенами, должны быть оборудованы бактерицидными лампами.

В автоклаве, столах и стеллажах обязательна маркировка чистых и зараженных материалов.

Лабораторная мебель, поверхности пола, покрытия стен и потолка должны быть гладкими и устойчивыми к воздействию моющих и дезинфицирующих средств.

Согласно технике безопасности при использовании ПБА соблюдаются следующие требования:

К обращению с патогенными биологическими материалами (ПБМ) работники допускаются после инструктажа по технике безопасности, проводимого не реже одного раза в месяц
Год;
Персонал должен быть обеспечен средствами индивидуальной защиты (халатами, головными уборами, сменной обувью);
Сотрудники должны работать в резиновых перчатках и масках;
Перед стиркой одежду необходимо обезвредить;
Поместить емкость с ПБМ на поднос с салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором;
Перед работой следует проверить качество стеклянной посуды, пипеток, шприцов и другого оборудования;
При обращении с пипетками используйте только резиновые груши или автоматические устройства;
Заливать материалы в торцы емкостей (пробирок, колб) и оставлять без присмотра рабочую зону во время работы с ПБМ категорически запрещается;
Курение, питьевая вода, куртки, головные уборы, обувь и хранение продуктов питания запрещены в грязных помещениях;;
После окончания работ все предметы, содержащие ПБМ, необходимо хранить на складе (холодильник, термостат, шкаф);
Использованную пипетку полностью (вертикально) погружают в дезинфицирующий раствор во избежание образования пузырьков в канале;
Категорически запрещается сбрасывать отходы ПБМ в канализацию без предварительной дезинфекции;
Обломки ПБМ, использованные инструменты и оборудование собираются в закрытые контейнеры и передаются в автоклав;
Дезинфицировать рабочие поверхности стола по окончании работы с ПБМ.

Санитарно-эпидемиологическое заключение и требования безопасности

Каждая лаборатория независимо от ее принадлежности имеет право осуществлять деятельность только при наличии санитарно-эпидемиологического заключения о возможности проведения работ с патогенными биологическими агентами (дается срок действия 5 лет).

Сотрудничество с ПБА III-IV групп разрешается главным государственным врачом субъектов Российской Федерации I-II групп. Сотрудники лаборатории должны иметь высшее или среднее специальное образование и проходить ежегодное обучение технике безопасности при обращении с биологически активными биологическими материалами.

В университетских аудиториях микробиологии студенты должны соблюдать следующие минимальные требования безопасности:

Входить в помещения лаборатории и работать там разрешается только в специальной одежде: халате и головном уборе (шапка, шарф);
следует учитывать, что исследуемый материал может содержать ПБА;
Посторонние предметы запрещены. Личные вещи (портфели, сумки) оставляются в отведенном для этого месте;
Прием пищи строго запрещен;
Не допускается пережигание с одной горелки на другую во избежание взрыва;
вход в помещения при включенных бактерицидных лампах невозможен;
При попадании микробных веществ или культур на пол или стол эти поверхности обрабатываются дезинфицирующим раствором;
После окончания работы обучающиеся сдают использованные материалы (патогенные материалы, бактериальные и грибковые культуры, инструменты и т.п.) преподавателю или лаборанту для дезинфекции, а рабочее место тщательно убирают и дезинфицируют. Вымойте и продезинфицируйте руки. Халаты и головные уборы будут помещены в полиэтиленовые пакеты.
После ознакомления с правилами техники безопасности кафедры микробиологии студенты подписывают соответствующий журнал.

Оборудование

Лаборатория должна иметь следующее оборудование:

Термостат. Используется для культивирования микроорганизмов. Это шкаф с двойными стенками, а пространство между ними заполнено водой или воздухом. Он оснащен устройством для поддержания постоянной температуры в диапазоне 28-43°С (водяной термостат лучше поддерживает стабильную температуру).
Микроаэростат. Необходим для культивирования микроорганизмов в анаэробных условиях. Это герметичная емкость, в которую помещают засеянные пробирки и чашки Петри, удаляют воздух с помощью насоса и нейтрализуют кислород с помощью реагентов.
Печь Пастера и автоклав. Используется для стерилизации инструментов, лабораторной посуды, питательных сред, рабочей одежды и т д
Домашний холодильник с температурой 4-6℃ и низкой температурой (ниже ~20℃). В нем хранятся питательные среды, культуры микроорганизмов, вакцины, сыворотки и материалы, полученные для бактериальных исследований.
Центрифуги настольные, центрифуги-рефрижераторы (для разделения компонентов при низких температурах), микроцентрифуги предназначены для осаждения микроорганизмов, отделения образовавшихся компонентов от плазмы и т.п.
Микроскопы предназначены для обнаружения микроорганизмов в исследуемых материалах и изучения морфологических особенностей клеток изолированных культур микроорганизмов.

Помимо перечисленного оборудования, в лаборатории потребуются:

горелки,
вакуумные насосы,
дистилляторы,
технические и аналитические весы,
водяные бани,
потенциометры,
стерильные фильтры,
гомогенизаторы,
оборудование для изготовления ватно-марлевых тампонов,
лабораторная посуда - чашки Петри,
бактериологическая и лабораторная серологические пробирки,
пластиковые планшеты для культуральных исследований и микротитрований,
колбы,
градуированные цилиндры,
матрасы,
градуированные пипетки и пипетки Пастера,
специальные инструменты - бактериологические.
Мишень-петля,
игла,
шприц,
пинцет,
шпатель,
ножницы счетчик колоний.
Оборудование для компьютеризации и автоматизации бактериологических и серологических исследований.

Световой микроскоп и техника микроскопирования

Для изучения морфологии и строения микроорганизмов применяют микроскопы, обеспечивающие увеличение в сотни раз (оптические) или тысячи раз (электронные). Бактериологическая лаборатория оснащена микроскопами различных типов: МБР-1, МБИ-1, МБИ-2, МБИ-3, МБИ-6, «Биолам».

К механической части микроскопа относится штатив, состоящий из основания. И держатель для трубки. Трубодержатель снабжен столиком с тубусом, револьвером, представляющим собой вращающийся диск с гнездом для линзы, и зажимом, фиксирующим предметное стекло на объекте исследования.

Трубку перемещают вверх и вниз с помощью макро- и микрометрических винтов.

Оптическая часть микроскопа состоит из осветителя, зеркала, диафрагмы, конденсора, объектива и окуляра. Под конденсором подвижно закреплено зеркало, одна из его поверхностей плоская, другая — вогнутая.

Если вы используете конденсор, используйте плоскую поверхность без конденсора и вогнутую сторону зеркала. Для концентрации световых лучей, отраженных зеркалом, используется конденсор, фокус которого должен находиться в плоскости препарата.

Верхняя линза конденсора плоско-выпуклая, нижняя — двояковыпуклая. Под конденсором расположена апертурная (ирисовая) диафрагма. Освещенность поля зрения регулируется путем изменения диаметра апертурного отверстия, через которое проходит световой луч.

Объектив состоит из нескольких линз, заключенных в металлическую оправу. Только одна линза (передняя) выполняет функцию увеличения, остальные предназначены для коррекции изображения. Под рабочим расстоянием объектива понимается расстояние от плоскости передней линзы до объекта исследования в фокусе.

Чем выше увеличение объектива, тем уже рабочее расстояние и поле зрения. На корпусе объектива указана кратность увеличения (8х, 20х, 40х, 90х) и числовая апертура, указывающая количество света, попадающего в объектив. Окуляр содержит окуляр и собирающую линзу, увеличивающую изображение, получаемое линзой.

Увеличение указано на окуляре (х5, х7, х10, х15). Общее увеличение микроскопа равно произведению увеличений окуляра и линзы. Например, окуляр с 10-кратным увеличением и объектив с 90-кратным увеличением увеличат объект в 900 раз.

Важно получить не только увеличенное изображение объекта исследования, но и четкое изображение. Резкость изображения зависит от разрешения микроскопа. Под разрешением понимается минимальное расстояние, на котором две точки можно увидеть по отдельности.

Разрешение микроскопа можно увеличить, используя более короткие световые лучи или приближая показатель преломления среды, прилегающей к линзе, к показателю преломления стекла.

Для этого воздушное пространство между линзой объектива и предметным стеклом заменяют специальной жидкостью с показателем преломления, близким к показателю преломления стекла. Это особенно необходимо при использовании объективов с большим увеличением (90x и выше) с небольшой площадью передней линзы.

Показатели преломления стекла и воздуха равны 1,52 и 1,0 соответственно. Поэтому в качестве иммерсионных жидкостей для создания оптически однородной среды между предметным стеклом и объективом чаще всего используют кедровое масло (n = 1,5), глицерин (n = 1,4) и воду (n = 1,3).

Объективы с масляной иммерсией называются «МИ», а линзы с водной иммерсией — «VI».

Последовательность операций при микроскопическом исследовании объекта следующая:

Проверьте состояние конденсатора. Конденсатор должен подняться до уровня ступени, а диафрагма должна быть открыта;
Поднимите тубус микроскопа и установите линзу наименьшего увеличения в рабочее положение (х8, х10);
Посмотрите в окуляр и с помощью зеркала полностью осветите поле зрения;
Нанесите на испытуемое средство каплю кедрового масла (или его заменителя);
Поместите препарат на столик и поверните револьвер, чтобы прикрепить иммерсионную линзу (трубка должна оставаться поднятой, чтобы линза не касалась стола);
Под визуальным контролем (глядя сбоку) слегка поверните макровинт, погрузив переднюю линзу объектива в каплю иммерсионного масла, и, наблюдая в окуляр, осторожно сдвиньте тубус до упора вверх появляться;
Аккуратно поворачивайте микрометрический винт (назад и вперед), чтобы отрегулировать резкость изображения;
По окончании работы поднимите тубус макровинтом, переведите револьвер в нейтральное положение и аккуратно удалите масло с линзы мягкой хлопчатобумажной тканью;
Поместите микроскоп в футляр или накройте колпачком, чтобы защитить его от света.

Для исследования живых неокрашенных микроорганизмов под микроскопом используются специальные оптические системы, такие как устройства фазового контраста или темнопольные конденсоры.

К фазово-контрастным устройствам относятся:

Фазовая пластинка – прозрачный диск, расположенный в задней фокальной плоскости линзы. На его поверхность нанесено металлическое кольцо (фазовое кольцо);
Кольцевая диафрагма – светоэкранирующая пластина с прозрачной кольцеобразной частью, расположенная под конденсором.

Когда световая волна проходит через живую клетку, она задерживается по фазе примерно на четверть длины волны, а затем смещается еще на четверть после прохождения через фазовую пластинку.

После прохождения фазовой пластинки лучи совмещаются и суммируются с прямым лучом, проходящим через объект, либо они находятся в противофазе. В первом случае исследуемый объект кажется ярким на темном фоне, во втором – темным на светлом фоне.

В микробиологии широко используются фазово-контрастные приборы КФ4, при их использовании объекты кажутся темными на светлом фоне.

Последовательность перехода к использованию фазоконтрастных приборов:

Штатный конденсор заменяется на фазоконтрастную линзу, а линза х40 заменяется аналогичной фазовой линзой;
Поворачивайте диск револьвера конденсатора до тех пор, пока в окошке не появится цифра «0»;
Диафрагма конденсатора полностью открыта;
используйте объектив 4 х 8, чтобы настроить оптимальное освещение;
Заменить штатный окуляр вспомогательным и с помощью тубуса добиться четкого изображения фазовой пластинки в виде темного кольца;
установите кольцевую апертуру для размещения объектива 6x40. При этом светлое кольцо апертуры видно вместе с темным кольцом фазовой пластинки. С помощью центрирующего винта выравнивают фазовое кольцо и кольцо диафрагмы;
Замените вспомогательный окуляр обычным окуляром и осмотрите образец под микроскопом.

В темнопольной микроскопии используется специальный конденсор с затемненной центральной частью, так что в интересующую плоскость попадают только боковые лучи, отраженные от внутренней зеркальной поверхности конденсора.

Поле зрения кажется темным, поскольку луч света направлен под углом, не попадающим на линзу объектива. Некоторые лучи, попадающие на объект, отражаются
Линза позволяет увидеть яркое изображение объекта на темном фоне.

Чтобы переключиться на темнопольную микроскопию, выполните следующие действия:

Выньте окуляр, светоконденсор и снимите одну из линз (8 шт);
Закройте диафрагму осветителя и сфокусируйте нить лампы на белой бумаге, положенной на зеркало;
Откройте диафрагму осветителя, накройте конец трубки матовым стеклом и при помощи зеркала добейтесь равномерного освещения поля зрения;
Установите окуляр, линзу x8 и темнопольный конденсор на место, не меняя положения зеркала;
Поместите каплю дистиллированной воды на конденсорную линзу и поместите препарат «разбитая капля» на стол так, чтобы вода на конденсорной линзе соприкасалась с нижней поверхностью предметного стекла;
Глядя в окуляр, с помощью центрирующего винта переместите световое кольцо с темным пятном в центре в центр поля зрения. Далее настройте видимость объектов в поле зрения.

НИИ микробиологии оснащен флуоресцентными микроскопами отечественного и зарубежного производства. Атомы некоторых веществ, называемых флуоресцентными красителями, поглощают энергию и переходят на более высокий энергетический уровень (возбуждение).

Возбужденное состояние слабое и стабильное, атом возвращается на стабильный низкий энергетический уровень и выделяет избыточную энергию в виде свечения. Свет люминесценции имеет большую длину волны, чем свет возбуждения, поэтому, когда объект облучается невидимым ультрафиолетовым светом или коротким сине-фиолетовым светом, объект светится длинноволновым светом, который хорошо виден невооруженным глазом.

В микробиологии исследуемые препараты обрабатывают флуоресцентными красителями (изотиоцианат флуоресцеина, родамин лиссамин и др.), придающими исследуемому объекту сильную люминесцентную способность. В люминесцентном микроскопе источником возбуждения люминесценции является ртутно-кварцевая лампа.

Для проведения люминесцентной микроскопии по лучу света ртутно-кварцевой лампы применяют специальные фильтры, выделяющие коротковолновую (сине-фиолетовую) часть спектра и возбуждающие ее лучи свечением исследуемого объекта.

Длина обрезана, потому что испускающие лучи блокируются (иначе все поле зрения сильно светилось бы). Для этого между источником света и исследуемым объектом помещают светофильтр типа УФС-3, ФС-1 или СС-4, называемый светофильтром «возбуждения».

При этом длинноволновая яркость (излучение) светового потока от наблюдаемого объекта передается на окуляр, одновременно защищая глаза наблюдателя от коротковолновых (возбуждающих) лучей. Для этого между объектом и глазом наблюдателя размещают окулярные (запирающие) светофильтры типов ЖС-3, ЖС-18, Т1Н и Т-2Н.

Совместное использование фильтров возбуждения и отсечки в оптической системе флуоресцентного микроскопа называется принципом скрещенных фильтров. Оптимально подобранный фильтр обеспечивает четкое свечение объекта на темном фоне в поле зрения лучи из

Лампа падает на светоделительную пластину между линзой и окуляром. Нежелательный длинноволновый свет проходит через светоделитель и исчезает внутри корпуса микроскопа.

Пластина отражает возбуждающий коротковолновый свет на исследуемый объект. Часть луча возбуждения преобразуется объектом в длинноволновый луч излучения, который перед попаданием в глаз наблюдателя проходит через линзу, светоделительную пластину и блокирующий фильтр.

Другая часть луча возбуждения остается неизменной и отражается светоделителем в сторону источника света – лампы. Это дифференцирующее свойство светоделительной пластины обусловлено тем, что светоделительная пластина покрыта множеством диэлектрических слоев и расположена под углом 45° к падающему лучу.

В флуоресцентной микроскопии в качестве иммерсионных жидкостей используют специальные нефлуоресцентные масла (обычные иммерсионные масла для этой цели не подходят, так как сами излучают свет).

Длины волн в видимой области спектра составляют от 0,4 до 0,7 мкм. Следовательно, максимальное разрешение (полуволны), которое можно получить с помощью оптического микроскопа, составляет примерно 0,2 мкм (200 нм).

Волновые свойства также уникальны для электронов. При напряжениях от 50 000 до 100 000 вольт длина волны электронов составляет от 0,0055 до 0,0039 нм. По чисто техническим причинам невозможно получить теоретическое максимальное разрешение 0,002 нм, а на практике оно никогда не превышает 1-2 нм.

К основным частям электронного микроскопа относятся набор магнитных линз, люминесцентный экран и фотопластинка. Ток проходит через вольфрамовую нить, вызывая эмиссию электронов.

К нити прикладывается высокое отрицательное напряжение, создавая большую разность потенциалов между нитью накала и заземленной анодной пластиной. В этом поле электроны движутся к аноду, часть из которых проходит через отверстие в центре (центральное отверстие) анода, образуя пучок электронов, который фокусируется первой магнитной линзой (конденсатором) и попадает на объект освещения.

Большинство электронов проходят через объект, не отклоняясь, но некоторые электроны выбрасываются из обычного электронного луча после столкновения с тяжелыми атомами. В результате формируется структура электронных лучей, которая в дальнейшем фокусируется для получения изображения объекта.

Электроны, проходящие через объект, фокусируются магнитной линзой объектива, создавая увеличенное изображение. Третья магнитная линза (проекция) также увеличивает изображение, которое в конечном итоге отображается на экране.

Когда флуоресцентная пластинка удалена, луч света попадает на фотопластину. Электронные микроскопы, создающие изображения при прохождении электронов через образец тонкой пленки, называются трансмиссионными или трансмиссионными микроскопами.

В сканирующем электронном микроскопе первичный электронный луч падает на поверхность объекта, закрепленного, высушенного и покрытого тонким слоем металла, создавая различные вторичные излучения.

Его прочность зависит от свойств рельефа, его проводимости и химического состава. С помощью сканирующего электронного микроскопа получают трехмерные изображения объектов. Полезное увеличение для сканирующей электронной микроскопии обычно не превышает 50 000 раз. 18:01

Основные формы бактерий

Клетки каждого вида бактерий имеют достаточно устойчивую форму, которую необходимо определить при идентификации микроорганизма (установлении его вида). В зависимости от формы бактерии подразделяются на следующие основные морфологические группы.

Кокки (лат cocci — зерна) — шаровидные бактерии, имеющие правильную шаровидную, овальную или бобовидную форму. В зависимости от взаимного расположения клеток их дифференцируют следующим образом:

микрококки – кокки, лежащие отдельно;
диплококки (diplos - двойной) - кокки, существующие парами;
Стрептококк – цепочки кокков, образующиеся в одной плоскости при делении клеток;
Стафилококк – при делении клеток образует скопления кокков неправильной формы;
Тетракокк - Строение из четырех кокков;
Сарцины - многослойная структура из 8-6 кокков.
палочковидные бактерии.

Клетки этой группы бактерий имеют цилиндрическую форму, среди которых выделяют следующие морфологические варианты:

Одиночная палочковидная бактерия;
Дисбактерии – клетки расположены попарно;
Стрептококк – Клетки расположены цепочками.

Палочковидные бактерии, которые при неблагоприятных условиях образуют специфическую форму существования, а именно споры, диаметр которых не превышает диаметра клетки, называются бациллами.

Если диаметр споры внутри клетки значительно превышает ее боковой диаметр, такое спорообразование является
Бактерия называется Clostridium.

Сложная (спиралевидная) бактерия. К ним относятся:

вибрионы – слегка изогнутые палочковидные клетки;
спириллы – бактерии, образующие до 6 завитков;
Спирохеты – бактерии со множеством (шесть и более) мелких завитков и, в отличие от спирилл, не имеют жгутиков.
ветвящиеся бактерии. Было показано, что прокариоты группы актинобактерий обладают замечательной способностью к ветвлению. Другие бактерии, например микобактерии, также проявляют тенденцию к дивергенции на определенных стадиях развития.

Бактерии, не имеющие постоянной формы. Микоплазмы не имеют клеточных стенок, поэтому легко меняют форму. Хотя есть исключения, большинство бактериальных клеток не дифференцируются на передний и задний или нижний и верхний концы, а значит, функционально эквивалентны.

Многие виды бактерий обладают способностью формировать морфологии на разных стадиях роста,
Отличается от типичного. Это явление называется бактериальным полиморфизмом.

Определение размеров микроорганизмов

Бактерии сильно различаются по размеру от 0,2 микрона (микоплазма) до 125 микрон. Размер большинства болезнетворных бактерий колеблется от нескольких десятых микрометра до нескольких микрометров. При характеристике размеров бактерий длину и ширину клеток обычно выражают в микрометрах (10–3 мм).

В качестве измерительных инструментов используются окуляр и объектив-микрометр. Окуляр-микрометр представляет собой стеклянную пластинку (помещенную внутри окуляра), имеющую линию шириной 5 мм, разделенную на 10 или 20 частей.

Объектом микрометра является предметное стекло с линией длиной 0,5 или 1,0 мм, разделенной на сотые доли. Размер клеток микроорганизма можно определить следующим образом. Поместите микрометр объектива на предметный столик и посмотрите в окуляр, чтобы совместить первую линию микрометра объектива и микрометра окуляра.

Определите цену конкретного окуляра и объектива в отделе окуляров и микрометров. Например, предметный микрометр имеет шкалу 1 мм, где одно деление равно 10-2 мм, или 10 микрон.

При объединении шкалы микрометра объектива 3 деления (30 мкм) соответствуют 14 делениям микрометра-окуляра, поэтому одно деление микрометра-окуляра составляет 30:14 = 2,14 мкм.

После определения цены одного деления окуляр-микрометра вместо предметного микрометра на столик помещают препарат с исследуемым объектом и определяют его размеры.

Например, палочковидный микроорганизм занимает 3 деления в длину и 0,5 деления в ширину окуляр-микрометра. Если одно деление окуляр-микрометра составляет 2 мкм, то длина бактериальной клетки равна 3 х 2 = 6 мкм, а ширина 0,5 х 2 = 1 мкм.